⚫ La “doble lectura” de la ADN polimerasa: la capacidad de la ADN polimerasa de corregir el agregado de bases incorrecatas
durante la replicaión del ADN por su actividad correctora 3’ exonucleasa.
⚫ La fotorreactivación: en este proceso se utiliza la energía de la luz visible para romper el anillo de ciclobutano formado en las
pirimidinas (T o C o U) adyacentes.
⚫ Transferencia de grupos alquilo: en los procesos de alquilación del ADN, donde ciertos agentes alquilantes transfieren a
bases, como la guanina, el grupo metilo o etilo. Algunas enzimas, como las con actividad metiltransferasas, pueden retirar el
metilo o transferirlo a otra molécula restableciendo la base original.
⚫ Eliminación de las bases dañadas seguida de su reposición con ADN recién sintetizado
⚫ Reparación por escisión de bases nitrogenadas: consiste en la elimanación de la base alterada del esqueleto del ADN (azúcar
+ fosfato). Un mecanismo de reparación por escisión de bases es la retirada de residuos dañados que se forman en el ADN.
Lo mejor ejemplo es el uracilo, que puede incorporarse en el ADN de dos formas: (1) El uracilo se incorpora ocasionalmente
en lugar de la timina durante la síntesis del ADN; (2) El uracilo se puede formar en el ADN por la desaminación de una
citosina (ese altera el patrón de pares complementarios). La escisión del uracilo es catalizada por la enzima ADN glicolisada,
la cual rompe la unión del uracilo con la desoxirribosa, está reacción produce un uracilo libre y un sitio apirimidínico o
apurínico (sitio AP)(azúcar sin base). La ADN glucosilasa también reconoce y elimina otras bases anómalas. Luego por acción
de las enzimas AP endonucleasa y desoxirribosafosfodiesterasa se retira el azúcar y el fosfato presente en el sitio AP y se
rellena el espacio por la ADN polimerasa y la ligasa.
⚫ Reparación por escisión de nucleótidos: se requiere cuando es más extenso que una base nitrogenada, como un dímero de
pirimidina inducidos por UV, que afecta al menos dos bases adyacentes. Consiste en la retirada de un oligonucleótido que
contienen una lesión, que tiene como objetivo eliminar un daño, como un dímero de timina. En éstos casos, el ADN dañado
es reconocido y después se abre la doble hebra por acción de la helicasa. A continuación, se escinde un segmento de la
cadena con el daño, por nucleasas 3’ y 5’ que rompen los extremos, produciendo la retirada del segmento dañado y sus
porciones aledañas. Posteriormente, el espacio desocupado es rellenado por la ADN polimerasa y fijado por la ligasa.
⚫ Reparación por eliminación de nucleótidos acoplada a la transcripción: ocurre durante el proceso de transcripción, el
mecanismo implica el reconocimiento de la ARN polimerasa detenida en una lesión de la hebra de ADN que se está
transcribiendo. La ARN polimerasa detenida es reconocida por una proteína denominada facto de acoplamiento de la
reparación a la transcripción, que desplaza a la ARN polimerasa y recluta a la escinucleasa a la zona de la lesión. En las células
de los mamíferos ese reconocimiento a la ARN polimerasa ocurre por las proteínas CSB y CSA. Tras el reconocimiento de la
polimerasa de ARN detenida, las proteínas CSA y CSB reclutan a XPA, RPA y TFIIH hacia la lesión de ADN y se produce una
reparación por escisión de nucleótidos.
⚫ Reparación no complementaria: es un mecanismo que barre de novo el ADN recién replicado, si se encuentra una no
complementariedad, las enzimas de este sistema de reparación son capaces de identificar y escindir la base no
complementaria específicamente de la hebra de ADN recién replicada, permitiendo que se corrija el error y la secuencia
original sea reemplazada.Las proteínas MSH y MLH reconocen la no-complementariedad, se unen a la base no apareada y
dirigen la escisión del ADN, que se encuentra entre la rotura de la hebra y apareamiento erróneo. La especificidad de la
hebra para la reparación no complementaria se puede identificar por la presencia de roturas en ambos extremos de los
fragmentos de Okazaki de la hebra recién replicada, mientras que la hebra conductora se puede identificar por su extremo 3’
en crecimiento.
⚫ Reparación de roturas de doble hebra: la rotura en ambas las hebras del ADN interrumpe la continuidad de dicha molécula,
talles roturas se producen de manera natural en el transcurso de la replicación, o, por otra parte, la radiación ionizante y
algunos compuestos químicos pueden producir roturas de doble hebra. Esa variable no es suscetible de reparación mediante
a los mecanismo anteriores. Los mecanismos de reparación para ese caso son: reparación recombinatoria y recombinación
homóloga. En la reparación recombinatoria las roturas de las hebras pueden repararse simplemente volviendo a unir los
extremos rotos de una sola molécula de ADN, esta forma de reparación introduce errores y hay pérdida de bases e punto de
unión. Mientras en la recombinación homóloga las roturas se reparen mediante una recombinación con secuencias de ADN
de un cromosoma ileso, lo que constituye una mecanismo para reparar esas alteraciones y restaurar la secuencia normal de
ADN. En las eucariotas ese mecanismo solo ocurre después de la replicación del ADN, cuando las cromátidas hermanas recién
replicadas siguen unidas.
Replicación de ADN in vitro: PCR y RT-qPCR
PCR (Reacción en cadena polimerasa)
⚫ Es una técnica de amplificación de ácidos nucleicos in vitro desarrollada por Kary B. Mullis en 1983.
⚫ Es una técnica molecular versátil, rápida, sensible y específica.
⚫ Componentes necesários para la realización: cadena que va a ser amplificada, primers, ADN polimerasa termoestable, sustratos
de ADN polimerasa (desoxidorribonucleotidos (A;G;T;C)) y cofactores.
⚫ Los pasos de la PCR son: desnaturalización, Hibridación y Elongación.
⚫ Desnaturalización: se eleva la temperatura a entre 93° y 95°C, bajo la cual los puentes de hidrógeno entre bases
complementarias se rompen.
⚫ Hibridación: se reduce la temperatura a entre 50° y 70°C permitiendo la formación de puentes de hidrógeno con la
consecuente asociación (annealing) de los cebadores a las cadenas templado.
⚫ Elongación: se eleva la temperatura nuevamente, pero ahora a alrededor de 70° y 75°, temperatura óptima para la ADN
polimerasa termoestable, facilitando la biosíntesis de ADN.
⚫ Las variaciones de temperatura son generadas por un aparato conocido como termociclador.
⚫ La enzima polimerasa (Taq polimerasa) se obtuvo inicialmente de bacterias termófilas del género Thermus aquaticus. Se trata de
una ezima polimerasa termoestable. La Taq polimerasa no tiene actividad 3’ exonucleasa.
⚫ La amplificación es exponencial, luego de 25 ciclos se pueden obtener 10
5
moléculas amplificadas.